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大鼠脑出血模型


造模方法


大鼠于术前禁食12h,称重后给予0.4%戊巴比妥钠1ml/100g进行腹腔注射麻醉。麻醉后采用断尾取血法采集大鼠自体尾部血液。常规消毒后在距鼠尾尖部约5mm 处剪断鼠尾,滴取血液至EP 管中,用微量进样器抽取自体血50ul 备用。采血后鼠尾常规进行消毒并止血。将大鼠以俯卧位用立体定位仪固定在操作台上,使前后囟处于同一平面,门齿沟的水平与耳间线比较低2.4mm。常规备皮消毒,充分暴露手术区域,沿头皮正中纵行切开约10mm,显露颅骨,用30%双氧水腐蚀骨膜,暴露前囟和冠状缝,根据《脑立体定位图谱》进行尾壳核定位。将微量进样器固定于立体定位仪上,调整左右及前后坐标尺使微量进样器尖端垂直于矢状缝右侧旁开3.0mm,前囟前0.2mm 处,用三棱针在正对针尖下方钻一直径约1.0mm 的小孔,深度达硬脑膜表面,调整上下坐标尺,以颅骨外板为零点,使微量进样器进针深度为6.0mm。按照5ul/min 的速度,缓慢匀速的将大鼠自体血加50ul 注入至尾壳核内,注血完成留针约15 分钟后再缓慢的退针,用骨蜡对钻孔进行封闭后缝合手术切口,进行常规消毒后将大鼠侧卧位放置于单独的鼠笼。假手术组只行进针,不注入自体血,手术操作同其余各组。上操作均遵守无菌原则。


 

造模照片                                        出血效果


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