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  1. 2017-11-08 公司介绍
  2. 2017-11-08 动物代养
  3. 2017-11-08 企业文化
  4. 2017-11-08 英瀚斯工会
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动物模型构建平台
  • 实验动物的灌注固定方法和注意事项

    灌注固定主要用于神经系统,对神经系统防止变性。小鼠灌注灌流固定小鼠时我一般采用输液器的针头 (4 号半,这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白,针头要从心轴方向进针,刺入心尖 3~4 毫米左右就可以了,开始灌流后剪破右心耳,约 40 毫升生理盐水,后再灌流约 20 毫升多聚甲醛,整个灌流固定的过程就完成了。大鼠灌注按大鼠体重,用 2% 戊巴,比妥钠(0.25ml/100g)进行腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,向左心室内注射 1% 肝素钠 0.2ml 后经左心室行主动脉插管,血管钳固定后剪开右心耳,先以生理盐水 150ml 快速冲洗血管,然后用 4% 多聚

  • 失血性休克模型建立

    失血性休克(Hemorrhagic shock,HS)是一种外科常见的急危重症,其由于急性失血量超过机体总循环血量的20%而引发的血液灌流减少,导致细胞功能所需氧气和营养物质输送不足。当失血量超过总血量的40%时出现器官组织的不可逆损伤。失血性休克持续进展会导致急性呼吸窘迫综合征和多器官功能不全综合征等一系列危及生命的严重并发症,甚至导致死亡。一、实验材料SD大鼠(8周龄)生理记录仪肝素血压监测仪二、实验步骤:2.1实验大鼠给以10%水合氯醛0.3ml/100g腹腔麻醉,在大鼠右侧颈动脉插管放置留置针,留置针内充满肝素钠等渗盐水( 500 U/kg)抗

  • 失血性贫血动物模型

    1)小鼠失血性贫血模型常用的小鼠造模法主要有眼眶后静脉丛放血法和剪尾尖或切开尾动脉法。①眼眶后静脉丛放血法:用左手固定小鼠并轻轻对颈部施加压力,使头部静脉淤血,在突出的眼球旁分辨出后眼眶静脉,然后用少量10%可卡因滴入动物眼内,使眼部局部麻醉;右手持消毒过的毛细吸管从内侧眼角由鼻侧眼眶平行地向喉头方向轻压至后眼眶静脉丛,血液自然吸入管内,放血6~8滴(约0.5ml)。毛细吸管内径0.5~1.0mm,可用聚氯乙烯管或玻璃毛细管制成,采血时毛细管与鼠面成45°角,在泪腺区域内,由眼内角在眼睑和眼球之间向喉头方向刺入。若为针

  • 肾血管性高血压动物模型

    一、肾血管性高血压概述肾血管性高血压为一侧或两侧肾动脉主干或分支狭窄、阻塞使肾血管流量减少导致肾缺血引起的高血压,为最常见的继发性高血压。我国肾血管性高血压占高血压人群的2%~7%。肾血管性高血压是由于缺血导致肾素-血管紧张素-醛固酮系统的激活而产生的,而肾素一血管紧张素一醛固酮系统的激活引发高血压的发病机制中已被公认。因此,动物肾动脉狭窄,能非常相似地复制出高血压模型。1934年Goldblatt证实狭窄犬肾动脉可产生持续性高血压,为高血压的实验研究开辟了一条途径。肾血管性高血压大鼠动物模型复制简便、动物来源充

  • 肾小管坏死小鼠模型

    【操作步骤】BALB/c小鼠,放置在每升空气中含有5mg的氯仿的环境中,持续3h后,可引起不同程度的肾坏死。【结果分析】出生46~106d的雄性小鼠发生率可高达90%以上。持续在氯仿气雾中24h,动物肾脏组织学观察,肾广泛损害且肾小管明显坏死。7.8.2急性肾小管坏死大鼠模型【操作步骤】SD或Wistar大鼠,体重190~250g,实验前置于代谢笼中饲养,记录食物、饮水和尿量。实验时由尾静脉注射氯化汞1.0mg/kg。24h后出现急性肾小管坏死表型。【结果分析】尾静脉注射氯化汞24h后,尿量明显减少,尿渗透浓度降低,且出现细胞学的改变,近曲小管的末端

  • 三种常见动物模型神经功能评分方法

    在各种致病因素作用下,大脑实质受到损伤后可出现神经功能改变,如偏瘫、平衡失调等。对于中枢神经系统疾病动物模型而言,造模结束只是第一步,验证个体模型是否成功是第二步,而控制组内个体特征一致性是第三步。采用神经功能评分是重要的观察指标,可以用来在体评价模型是否成功或者病变严重程度。尽量控制动物模型的评分一致性是很困难但不得不做的一件事。这里介绍三种常见的啮齿类神经功能评分方法。一、【Longa评分法】① 无神经功能缺陷:0分;②瘫痪侧前爪不能完全伸展:1分;③行走时向瘫痪侧转圈:2分;④行走时向瘫痪侧倾倒:3

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